Заболевания животных

 Вначале заготовляют целлофановые пленки. Для этого из гидрофильного целлофана толщиной 22 мкм нарезают прямоугольные кусочки размером 2х3 см и помещают их на 24 ч в чашку Петри, содержащую 50%-ный раствор молочной кислоты (можно глицерина). На 500 целлофановых пленок необходимо иметь 100 мл раствора молочной кислоты.

После подготовки целлофановых пленок берут пробу фекалий массой 2 г и размешивают их в стаканчике с небольшим количеством воды. Взвесь фильтруют через металлическое ситечко в другой чистый стакан емкостью 50 мл, отстаивают в течение 5 мин, сливают надосадочную жидкость, а к осадку добавляют 35-40 мл водопроводной воды, опять отстаивают 5 мин, надосадочную жидкость сливают, осадок переносят на предметное стекло и покрывают целлофановой пленкой. Через 8-10 минут проводят микроскопирование препарата. Метод применяется для диагностики фасциолеза, парамфистоматидозов, аскаридатозов, трихоцефалезов и других паразитозов животных.

Вначале готовят искусственный желудочный сок по следующей прописи: соляной кислоты концентрированной 7 мл, пепсина 7 г, воды до 1 л. На 1 л искусственного желудочного сока берут 80—100 г фарша, который помещают в стеклянный сосуд и тщательно перемешивают. После этого стеклянный сосуд с содержимым помещают в термостат при температуре 37°С на 16—18 ч. Содержимое в сосуде периодически перемешивают с помощью магнитной (лучше — электрической) мешалки. После окончания переваривания массу из сосуда переносят в аппарат Бермана, используя сито из мельничного газа (№ 26). Через полтора-два часа все личинки трихинелл, находившиеся в пробе фарша, оседают на дно пробирки. Верхний слой жидкости в пробирке отсасывают пипеткой, а осадок микроскопируют.

От каждой туши животных берут по 60 г мышечной ткани (лучше — из ножек диафрагмы) и ножницами Купера делают 24 среза величиной с овсяное зерно. Все срезы закладывают в компрессорий, пластины его сдавливают с помощью винтов, помещают под микроскоп или трихинеллоскоп с экраном и исследуют. Инкапсулированные личинки трихинелл имеют овальную или лимоновидную форму. Внутри капсулы обычно находится одна, реже — две-три личинки. Длина капсулы 0,5—0,7 мм, ширина 0,2—0,3 мм. Когда встречаются обызвествленные капсулы, личинки в них не видны. Для выявления личинок трихинелл срезы мышц помещают в чашку Петри с 5-10%-ным раствором соляной кислоты. Чашку Петри ставят в термостат при температуре 37°С на 25-30 минут. После этого срезы мышц помещают в компрессорий и исследуют при малом увеличении микроскопа.

Личинки трихинелл необходимо дифференцировать от мишеровых мешочков (с саркоспоридиями), цистицерков (финн). В отличие от личинок трихинелл мишеровы мешочки не имеют соединительно-тканной капсулы, оболочка их тонкая, прорастает внутрь и делит мешочек на ячейки, внутри которых находятся мерозоиты. Мишеровы мешочки могут быть различной формы (вытянутые, округлые, веретеновидные и др.) размерами от 0,005 до 4-5 мм длиной и от 0,002 до 3 мм шириной.

В отличие от личинок трихинелл молодые цистицерки (финны) локализуются не в мышечных волокнах, а между ними. Величина их варьирует от 0,03 до 15 мм. Чаще их обнаруживают в мышцах сердца.

Когда возникают сомнения в постановке диагноза на трихинеллез при трихинеллоскопии, кусочки мышц переваривают в искусственном желудочном соке и проводят исследование осадка.

применяется для быстрого выделения из проб фекалий диктиокаул. Для этого пробу фекалий массой 5 г помещают в стаканчики с раствором сульфата цинка и в течение 2 мин их разгоняют по кругу стеклянной палочкой. Через 5—10 минут пробы удаляют из стакана пинцетом, а жидкость оставляют в покое на 10—15 минут. После этого металлической петлей диаметром 8 мм с поверхности жидкости снимают 6 капель, помещают их на предметное стекло и микроскопируют. При этом следует помнить, что личинки диктиокаул сохраняют подвижность в растворе серно-кислого цинка в течение 3 ч, личинки стронгилят желудочно-кишечного тракта, а также стронгилоиды—1-2 мин. Личинки мюллерий свертываются в клубочки и внешне напоминают пузырьки воздуха.

При отборе и отправке в ветеринарную лабораторию проб фекалий от жвачных в данном случае необходимо помнить, что исследования надо проводить в день взятия проб, так как уже при температуре свыше 20°С в фекалиях через 14-17 ч могут развиться личинки стронгилят желудочно-кишечного тракта, что затруднит диагностику.

Для дифференциации личинок диктиокаул овец предложена методика окраски, для чего к осадку добавляют 1-2 капли 0,1%-ного водного раствора метиленового синего. Через 30 с при микроскопировании можно видеть личинок диктиокаул, окрашенных в ярко-сиреневый цвет, личинки диктиокаул крупного рогатого скота — в светло-сиреневый, а личинки других нематод не окрашиваются (Г. А. Котельников,1984).

Определение родов семейства Аrgasidае

.

Для обнаружения чесоточных клещей делают соскобы с кожи. С этой целью путем осмотра на животном находят свежие чесоточные поражения и на границе здоровой и больной ткани брюшистым скальпелем соскабливают (до крови) верхний слой кожи. Если там нет выраженных очагов поражения, соскобы делают со складок или уплотненной кожи, где могут находиться чесоточные клещи.

У крупного рогатого скота, свиней, лошадей, овец соскобы делают более глубокие. У птиц их делают под роговыми чешуйками передней поверхности конечностей, с кожи и перьев. С этой целью роговые чешуйки выщипывают.

Если предполагается немедленное исследование, соскобы помещают в чашку Петри, если позже, их хранят в пробирке, которую обязательно плотно закрывают резиновыми пробками.

В соскобах при исследовании находят либо живых (подвижных), либо мертвых клещей, поэтому обработку соскобов проводят различными способами.

 считается высокоэффективным при применении раствора с плотностью 1,38—1,40 для диагностики аскаридатозов, стронгилятозов, трихоцефалезов, стронгилоидозов, эймериозов и других паразитозов.

Технически исследования проводятся так же, как и методом флотации с применением аммиачной селитры. Капли с поверхности стаканчика или центрифужной пробирки можно снимать через 8—10 мин для проведения исследований.

 применяется для диагностики диктиокаулеза животных. Для этого пробу фекалий массой 8—10 г помещают на кусочек марли, концы которой закручивают проволокой и подвешивают в стакан с водой при температуре 32-35°С. Пробы фекалий мелких жвачных и лошадей выдерживают в течение 3 ч, крупного рогатого скота – 12 ч. Затем пробы фекалий из стаканов извлекают, воду осторожно сливают, а осадок помещают в пробирку и центрифугируют в течение 1 минуты со скоростью 1000 об/мин. Надосадочную жидкость в пробирке сливают, а осадок кладут на предметное стекло и микроскопируют.

Из класса паукообразных (Аrасhnoidea) ветеринарная арахнология изучает клещей из отряда Раrаsitiformes (паразитиформные клещи) и из отряда Асаriformes (акариформные клещи).

Отряд паразитиформных клещей включает надсемейство Ixodoidea—иксодоидных клещей и надсемейство Gamasoidea — гамазоидных клещей. Иксодоидные клещи делятся на два семейства: Ixodidae—иксодиды и Агgasidae — аргазиды.

Отряд акариформных клещей объединяет 2/3 всех известных клещей и представлен подотрядами Sarcoptiformes, Trombidiformes и Oribatei. К   подотряду Sarcoptiformes относится надсемейство Sarcoptoidea — саркоптоидные клещи, включающие два семейства — Psoroptidae и Sarcoptidae.

Подотряд Trombidiformes включает клещей семейства Demodecidae рода Dеmodex, вызывающих демодекозы животных (см. табл. 14).

Из отряда паразитиформных клещей иксодовые могут быть переносчиками и резервентами возбудителей протозойных, вирусных, бактериальных и грибковых заболеваний животных.

Для определения родовой принадлежности иксодовых клещей собирают на животных — сельскохозяйственных и диких, в том числе и на мелких млекопитающих. Собранных паразитов на несколько секунд помещают в 70°-ный спирт, подогретый до 70°С.

Погибших и умерщвленных спиртом клещей помещают во флаконы или пробирки со спиртом (70°), вешают этикетку и хранят. Их можно хранить также в 3-5%-ном растворе формалина. Затем клещей вынимают из фиксирующей жидкости, помещают в бактериологическую чашку на фильтровальную бумагу для высыхания, но не пересыхания, так как могут отламываться ноги и хоботок. После высыхания их помещают на предметное стекло или на полоски гофрированной бумаги и просматривают под бинокулярной лупой. Просматривают вначале спинную, затем брюшную и боковые поверхности клещей. В это же время определяют длину хоботка, форму его основания, наличие на нем корнуа, аурикул, поровых полей, определяют форму пальп, гипостома
и т. д.

При изучении верхней стороны тела клеща определяют величину спинного щитка (для определения пола особи). Устанавливают его форму, характер пунктировки, наличие глаз, пармы или каудального отростка, фестонов. Обращают внимание на форму и длину цервикальных и латеральных бороздок. В дальнейшем обращают внимание на коксы первых ног (расщепление их, форма шипов), длину и ширину четвертых кокс, наличие и количество анальных щитков (у самцов), на их форму, расположение анальной бороздки, форму и длину перитрем. По этим и другим признакам определяют род клеща (см. табл. 14). При необходимости определяют вид паразита.

Эхинококковые пузыри развиваются медленно, поэтому в ранний период обнаружить их довольно трудно. Например, в возрасте 5 месяцев они имеют величину 5-7 мм и содержат небольшое количество прозрачной жидкости. Поэтому только при тщательном осмотре измельченных печени, легких и других внутренних органов можно обнаружить малой величины эхинококковые пузыри. При микроскопии на внутренней оболочке вскрытого пузырька можно обнаружить 1-2 скобочки или складочки. Это — будущие лакуны, из которых через полтора года образуются сколексы, способные инвазировать дефинитивного хозяина.